Zajęcia organizacyjne. Zasady pracy z mikroskopem i podstawowe techniki mikroskopowe. Porównanie komórek roślinnych i zwierzęcych oraz Procaryota i Eucaryota.
Praktyka: przygotowanie i obserwacje: epidermy cebuli, komórek nabłonkowych ludzkich;
Materiały zapasowe roślin i zwierząt. Wydaliny roślin.
Praktyka: lokalizacja komórkowa wydalin roślinnych, wykrywanie białek i cukrów;
Barwienia i obserwacje przyżyciowe.
Praktyka: badanie wpływu pH oraz stężenia barwnika przyżyciowego na wybarwienie organelli oraz żywotność komórek
Reakcje cytochemiczne.
Praktyka: wykrywanie oraz różnicowanie tłuszczów w komórce z wykorzystaniem Sudanu III oraz błękitu Nilu; wykrywanie skrobi płynem Lugola;
Cytochemiczna lokalizacja wybranych enzymów w komórce – system wakuolarny i energetyczny.
Praktyka: lokalizacja aktywności enzymatycznej w komórce metodą Gomoriego oraz metodą sprzęgania z solami dwuazowymi;
Plastydy: budowa, funkcje, różnorodność.
Praktyka: izolacja i obserwacje chloroplastów, wykrywanie różnych typów chromoplastów, lokalizacja leukoplastów w komórce;
Ściana komórkowa: budowa i funkcje.
Praktyka: wykrywanie celulozy błękitem metylenowym, lokalizacja ligniny w pokładach ściany wtórnej z użyciem floroglucyny-HCl;
Kwasy nukleinowe w komórce – DNA.
Praktyka: wykrywanie DNA metodą Feulgena;
Kwasy nukleinowe w komórce-RNA.
Praktyka: wykrywanie RNA oranżem G, różnicowanie kwasów nukleinowych metodą UNNA;
Podziały komórkowe – mitoza.
Praktyka: analiza stadiów mitozy na preparatach przygotowanych metodą acetokarminową;
Podziały komórkowe – mejoza.
Praktyka: analiza stadiów mejozy, rozwiązywanie zadań związanych z redukcją i segregacją materiału genetycznego;
Kariotyp.
Praktyka: układanie kariogramów chromosomów wycinanych ze zdjęć fotograficznych;
Kolokwium zaliczeniowe.
|